Перейти к:
Панкреатические островки: некоторые аспекты морфологии, физиологии и процессов деструкции при сахарном диабете I типа
https://doi.org/10.14341/probl11386
Аннотация
Современные взгляды на развитие, строение и функцию панкреатических островков.
Для цитирования:
Колесник Ю.М., Орловский М.А. Панкреатические островки: некоторые аспекты морфологии, физиологии и процессов деструкции при сахарном диабете I типа. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):3-10. https://doi.org/10.14341/probl11386
For citation:
Kolesnik Yu.M., Orlovskii M.A. Pancreatic islets: some aspects of the morphology, physiology and destruction processes in diabetes mellitus type. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):3-10. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11386
- Современные взгляды на развитие, строение и функцию панкреатических островков
У крыс уже на 12-й день эмбрионального развития в поджелудочной железе обнаруживаются небольшие кластеры эндокринных клеток, в которых выявляются инсулин, глюкагон, нейропептид YY (HYY) и панкреатический амилоидный полипептид (амилин) [51], синтезирующиеся на этой стадии вместе. Эндокринные клетки панкреатических островков крысы возникают на 2-й неделе эмбрионального развития в результате метаплазии эпителия протоков поджелудочной железы через ряд промежуточных этапов [51]. Первоначально они начинают синтезировать ряд белков, ответственных за регуляцию синтеза инсулина, глюкагона, соматостатина. Среди этих белков следует выделить PDX-1, активирующий синтез клеткой инсулина [28]. На 16-й день происходит разделение клеток на глюкагон- и инсулинсинтезирующие (пре- а- и пре-р-клетки соответственно). В пре-а-клет- ках совместно с глюкагоном продолжает синтезироваться HYY, а в пре-р-клетках его синтез прекращается, но начинается экспрессия гена нейропептида Y (НПУ) и усиливается синтез амилина [51]. Этот процесс сопровождается погружением пре-р- клеток внутрь формирующегося островка, окончательно завершающимся на 18-й день внутриутробного развития. Синтез панкреатического полипептида активируется непосредственно перед рождением в отдельной популяции р-клеток, которые постепенно трансформируются в РР-клетки.
В течение своего периода эмбрионального развития р-клетки синтезируют инсулиноподобные факторы роста I и II (ИФР-1, ИФР-П) [34, 36], которые оказывают аутокринное митогенное действие, потенцируемое гормоном роста и плацентарным лактогеном II [39, 54]. Непосредственно после рождения в островках резко снижается продукция ИФР, что приводит к массовому апоптозу р-клеток [36]. После этого состав островка обновляется за счет пролиферации сохранившихся р-клеток [36]. Роль подобной смены клеточных поколений в формировании зрелых островков еще недостаточно ясна.
Количество р-клеток в островке в норме в постэмбриональном периоде зависит от баланса их новообразования и апоптоза, который прежде всего определяется уровнем гликемии [13]. Новообразование р-клеток в основном происходит вследствие активации деления в уже дифференцированных р- клетках [54] и (или) дифференцировки из гипотетических, в норме неделящихся стволовых клеток островков [54]. Показано, что в островках не существует пула как постоянно делящихся клеток, так и клеток в необратимой фазе [17]. Гипергликемия оказывает на р-клетки митогенное действие [67], активируя протеинкиназу С и увеличивая уровень в них цАМФ. Помимо гипергликемии, деление р- клеток может активироваться рядом пептидов: гормоном роста [39], ИФР-I и ИФР-П [34], плацентарным лактогеном [39] и пролактином [17].
При ряде условий, например при сахарном диабете, кроме двух описанных классических путей, может происходить новообразование р- и а-клеток путем метаплазии клеток протоков и 6-клеток за счет активации экспрессии белка-регулятора PDX- 1 [28].
Сформированные островки Лангерганса состоят из эндокриноцитов энтодермального происхождения, кровеносных капилляров, симпатических терминалей, эфферентов и афферентов блуждающего нерва, нейронов, глиальных клеток и резидентных тканевых макрофагов [25, 42, 74].
- R. Orci и R. Unger [55] показали, что центр островка занимают р-клетки. по периферии располагаются а-клетки, а между этими слоями находятся 8-клетки, а- и 8-клетки входят в центральные области островка по ходу капилляров, образуя дольки, в которых они остаются внешними по отношению к р-клеткам. Кроме того, существуют особые гетероклеточные регионы, в которых все типы клеток располагаются смешанно. Предполагается, что эти регионы функционируют в роли пейсмекеров активности всех островковых клеток, поэтому в современных моделях функционирования островков Лангерганса им отводится ведущая роль [41]. При развитии сахарного диабета типа 1 эти области поражаются в первую очередь, приводя к нарушению межклеточных взаимоотношений в островках, играющих важную роль в процессах регуляции синтеза и секреции островковых гормонов.
р-Клетки, помимо секреции инсулина, С-пеп- тида и незначительного количества проинсулина, продуцируют ГАМК [46], которая образуется с помощью глутаминовой декарбоксилазы [41] и является ингибитором секреции глюкагона а-клетками [46]. Антитела к этому ферменту одними из первых появляются в крови у больных на начальных стадиях сахарного диабета [78].
а-Клетки секретируют глюкагон. а также неболь- цие количества его предшественника — прогормо- га глицентина [7]. Совместно с глюкагоном в а- слетках образуется панкреастатин, являющийся шгибитором секреции инсулина [76].
В последние годы показано, что в эндокрино- цитах островков синтезируется ряд нейропептидов. Некоторые из них образуются в специфических типах клеток (РР-клетки. образующие панкреатический полипептид), другие могут продуцироваться совместно с классическими гормонами в a-, (J- и 5- клетках. Среди них выделяются амилин, а также HYY и НПУ, которые относятся к семейству панкреатического полипептида. HYY широко представлен в островках и синтезируется практически всеми типами клеток [42]. НПУ в норме мало синтезируется в зрелых островках Лангерганса, где его основными продуцентами являются 5- и РР-клетки [53]. Однако под влиянием глюкокортикоидов в островках резко увеличивается его продукция, в основном за счет активации синтеза пептида в [3- клетках [53].
Амилин — полипептид, продуцируемый р-клет- ками [22] и в значительно меньшей степени 5-клетками [51]. В [3-клетках амилин локализуется и секретируется совместно с инсулином в ответ на пищевые стимулы [66]. Основными эффектами этого пептида является подавление продукции инсулина, снижение аргининстимулированной секреции глюкагона [66] и формирование инсулинорези- стентности в мышечной, но не в жировой ткани [22, 66]. Недавно получены свидетельства в пользу анорексического действия амилина [66].
Амилин может оказывать токсическое действие на пролиферирующие р-клетки, вызывая в них апоптоз. Его гиперпродукция в трансгенных линиях мышей приводит к возникновению сахарного диабета [38]. Однако инсулинзависимый сахарный диабет (ИЗСД) не приводит к формированию амилоида в островках и сопровождается пониженной продукцией амилина в результате деструкции р- клеток [19].
Широко представленный в фетальных инсулин- синтезирующих клетках ИФР-П в зрелых островках синтезируется только в 5-клетках, в то время как р- и а-клетки лишь его связывают, но не секретируют [34].
В небольших количествах в островках продуцируется холецистокинин (ХЦК), кальцитонин-ген родственный пептид (КГРП) [60] и некоторые другие пептиды, в том числе и упомянутый выше НПУ. Они участвуют в регуляции секреции классических островковых гормонов и могут активировать капсаицинчувствительные афферентные волокна блуждающего нерва [18].
В островках обнаружены единичные нейроны, содержащие НПУ [58] и нейрональную форму синтазы NO [44]. Предполагается, что продукция NO в норме участвует в регуляции кровотока в островках [44]. Т. Uchida и Т. Endo в 1989 г. доказали факт наличия в островках глиальных клеток небольших размеров, которые покрывают а-клетки [74].
Островки Лангерганса получают комплексную иннервацию, включающую в себя афференты и холинергические эфференты блуждающего нерва, а также немиелинизированные норадренергические эфференты симпатической нервной системы [42]. В симпатических терминалях совместно с норадреналином содержится НПУ [42], а в парасимпатических наряду с ацетилхолином находится вазоактивный интенстинальный полипептид (ВИП) [42, 57]. Помимо этих двух пептидов, в нервных тканях островков обнаружены КГРП, ХЦК, вещество Р, галанин и окситоцин [29, 47, 60]. Это свидетельствует о сложной, комплексной регуляции эндокринной функции поджелудочной железы, так как полноценный секреторный ответ р-клеток может быть получен только при правильной последовательности воздействия различных групп внеклеточных сигналов [64].
Нервные волокна избирательно контактируют с определенными типами клеток [60]. Так, ВИП-со- держащие парасимпатические терминали окружают группы р-клеток по периферии [57], а симпатические терминали (определяемые по наличию тирозиновой гидроксилазы) находятся как снаружи, так и в глубине инсулиниммунопозитивных областей [29], где они могут образовывать тесные контакты с р-клетками [31]’ Окситоцинсодержашие нервные окончания контактируют исключительно с р-клетками [47]. Нервные волокна, иммунореактивные к КГРП, веществу Р и галанину, в островках находятся чаще в инсулиниммунонегативных областях, однако среди р-клеток также встречаются единичные терминали, содержащие данные пептиды [29].
Одним из важнейших регуляторов секреторной активности эндокринной части поджелудочной железы является блуждающий нерв (БН). Согласно Н. Berthoud и соавт. [14], островки получают эфферентные проекции из дорсального моторного ядра БН. Эфференты БН в островках отвечают за цефалическую фазу секреции инсулина за счет сен- ситизации р-клеток ацетилхолином и ХЦК [79].
Афференты БН в поджелудочной железе содержат рецепторы к ХЦК типа А (ХЦК-АР) [18] и рецепторы к интерлейкину-1 (ИЛ-1) [15]. Эти волокна поступают в медиальное ядро ЯСТ, а также в дорсальную и вентральную части ретикулярной формации, area postrema и ядро шва [14], что свидетельствует о вовлечении в ответ на изменение состояния островковых клеток широкого круга структур мозга и подчеркивает важность ЦНС в регуляции эндокринной функции поджелудочной железы.
В норме в островках Лангерганса, как и в других тканях организма, присутствует неболышое количество резидентных макрофагов [25], которые являются покоящимися клетками и не участвуют в синтезе цитокинов. Однако, повреждение р-клеток вирусами, токсичными веществами типа стрепто- зотоцина и аллоксана приводит к активации макрофагов и запуску иммунных реакций [25].
Центральная часть островков обильно снабжена сильно фенестрированными капиллярами, которые образуют густую сеть синусов, что и определяет быстроту реакции островков на метаболические сигналы (глюкозы, аминокислоты) [1], которые в свою очередь способны усиливать кровоток в островках, действуя через центральные, кишечные и печеночные глюкорецепторы и БН. Кровоток в островках регулируется независимо от кровотока в экзокринной части поджелудочной железы, и его величина определяется комплексным действием нейропептидов, локально секретируемых медиаторов нервной системы (преимущественно норадреналина), NO и тканевой ренин-ангиотензиновой системы [70].
Основными стимуляторами синтеза инсулина являются глюкоза, манноза и лейцин [7]. Регуляция синтеза гормонов осуществляется при участии внутриклеточного Са2+, который опосредует свое действие через белок-регулятор экспрессии STAT- 5, непосредственно активирующий ген препроин- сулина [54]. Другой точкой приложения действия регуляторов синтеза инсулина является активация трансляции существующей в цитозоле мРНК на рибосомах, что не требует усиления транскрипции генов [37]. За счет этого механизма осуществляется вторая фаза секреции инсулина в ответ на стимуляцию глюкозой, которая приходится на 20—60-ю минуту [37].
Ингибирующее действие на синтез инсулина хорошо изучено на примере глюкокортикоидов, которые, укорачивая время жизни препроинсули- новой мРНК [59], тем самым снижают продукцию инсулина в р-клетках.
Питательные вещества (глюкоза и аминокислоты), поступающие в р-клетки, в результате своего окисления увеличивают внутриклеточную концентрацию НАДН2, тем самым активируя дыхательную цепь в митохондриях и увеличивая отношение АТФ/АДФ [40]. На р-клетках присутствуют АТФ- чувствительные К+-каналы, закрывающиеся в условиях увеличения концентрации АТФ, что приводит к деполяризации клетки и открытию потенциалзависимых Са2+-каналов L-типа [40]. Приток кальция внутрь клетки активирует ключевой фермент в секреции инсулина — кальций/кальмоду- линзависимую протеинкиназу II (СаМ-ПК II) [12]. Этот фермент фосфорилирует ряд белков цитоскелета, что приводит к экзоцитозу секреторных гранул [12].
Минимальная концентрация глюкозы, способная вызывать секреторный ответ р-клеток в отсутствие других стимулов, составляет 8—10 ммоль/л [64]. Однако в нормальных условиях р-клетки практически всегда подвержены действию широкого спектра просекреторных гормонов, которые снижают установочную точку к глюкозе. Среди них следует выделить ацетилхолин, ХЦК, гастрининги- бирующий пептид (ГИП), глюкагонподобный пеп- тид-1 (ГПП-1), окситоцин и вазопрессин [42, 49, 64, T9]. Они играют большую роль в цефалической фазе секреции инсулина в ответ на прием пищи еще до поступления глюкозы в кровь и частично обусловливают феномен инкретина [42, 79]. Этот феномен заключается в усиленной продукции инсулина в ответ на оральную нагрузку глюкозой по сравнению с внутривенным введением эквивалентных количеств глюкозы.
Гормоны — активаторы секреции инсулина по механизму действия можно разделить на 2 класса: 1) действующие через активацию гидролиза фосфатидилинозитолов (ацетилхолин и ХЦК) [64]; 2) стимулирующие аденилатциклазу (ГИП, ГПП-1) [49, 64].
Оба класса гормонов синергично усиливают секрецию инсулина при гликемии выше 4,0 ммоль/л, практически не действуя при более низких концентрациях глюкозы [12, 64, 79]. Стимуляция Мгхо- лино- и ХЦК-В-рецепторов р-клеток вызывает G-белокопосредованную активацию фосфолипазы С (ФЛ-С) [12], которая расщепляет мембранные фосфолипиды на два вторичных посредника — инозитолтрифосфат (InsP3) и диацилглицерол.
InsP3 открывает на мембранах эндоплазматической сети и митохондрий кальциевые каналы [79], вызывая увеличение внутриклеточной концентрации Са2+ [10]. Диацилглицерол активирует протеинкиназу С (ПК-С) [10], которая, как и СаМ-ПК II, фосфорилирует белки цитозоля и вызывает эк- зоцитоз секреторных гранул.
Ряд других гормонов, к которым относятся пролактин [17], гормон роста [8], ВИП [42], вазопрессин и окситоцин [23], ТТГ и опиоидные пептиды [8] также способны стимулировать секрецию инсулина при непосредственном действии на р-клетки. Механизмы реализации их эффектов еще недостаточно изучены, но, по всей видимости, они так или иначе связаны с Са2+- или цАМФ-зависимой активацией протеинкиназ и фосфорилированием белков цитоскелета.
К гормонам — ингибиторам секреции — относятся норадреналин и НПУ, которые через р2-ад- ренорецепторы и Y1-рецепторы соответственно подавляют глюкозовызванную секрецию инсулина Р-клетками [31, 42], не вызывая при этом изменений в базальном уровне секреции.
В последнее время большое внимание уделяется недавно открытому регулятору пищевого поведения — лептину, который синтезируется в адипоцитах [27]. Лептин является сигналом отрицательной обратной связи из жировой ткани в поджелудочную железу, формируя, таким образом, по мнению Н. Fehmann и соавт. [27], адипозоинсулярную ось. Эффект лептина реализуется через ингибирование увеличения внутриклеточной концентрации цАМФ [10] и Са2+ [27]. Инсулин также способен оказывать аутокринное ингибиторное влияние на свою секрецию через собственные рецепторы на р- клетках, усиливая захват Са2+ эндоплазматической сетью [77].
На основании перечисленных данных Н. Rasmussen и соавт. [64] предложили модель регуляции секреции инсулина в физиологических условиях. Согласно их предположению, секреция инсулина протекает в 3 фазы: цефалическую, раннюю кишечную и позднюю кишечную. Основным событием, происходящим в первые 2 фазы, является перенос ПК-С на мембрану в Са2+-чувствительной конформации, что не сопровождается увеличением уровня внутриклеточного Са2+. Согласно W. Zawal- ich и соавт. [79], за цефалическую фазу отвечает ацетилхолин, высвобождающийся из окончаний БН в островках Лангерганса. В поздней кишечной фазе происходит глюкозостимулированное повышение уровня внутриклеточного Са2+ и как следст- вне активация СаМ-ПК II и ПК-С, что и приводит к секреции инсулина.
Клетки островков образуют между собой 3 типа коммуникаций: десмосомы, плотные и щелевидные контакты [7]. С помощью последних формируется функциональный синцитий островка: электрическое возбуждение одних клеток легко передается другим, позволяя островку реагировать как единому целому (концепция островок — мини-орган) [7]. Кроме того, синтезируемые эндокриоци- тами гормоны способны действовать паракринно и аутокринно, усиливая интеграцию островковых клеток.
Основываясь на взаимном ингибирующем действии ГАМК и панкреастатина, секретируемых с инсулином и глюкагоном, а также на наличии щелевых контактов между клетками, J. Koeslag и Р. Saunders [41] в 1997 г. предложили математическую модель ''Daisyworld ("мир черных и белых маргариток"), расширяющую и дополняющую классическую концепцию островок — мини-орган. Согласно этой модели синцитии (а-(З)-клеток могут продуцировать либо инсулин, либо глюкагон. За счет паракринного действия ГАМК и панкреастатина эти синцитии играют роль "водителей ритма" внутри островка. В эугликемическом состоянии вероятность продукции синцитием инсулина и глюкагона равны. При потреблении пиши или введении глюкозы происходит усиление секреции инсулина с ГАМК и как следствие снижение секреции глюкагона. Гипогликемия оказывает прямо противоположное действие, растормаживая а-клетки и тормозя р-клетки. Таким образом, эта модель более глубоко описывает регуляцию синтеза гормонов в островках, однако она не является полной, так как не учитывает влияние ЦНС и других типов гормон- продуцирующих клеток островков.
- Механизмы деструкции панкреатических островков при сахарном диабете типа 1
Известно, что морфологическим субстратом ИЗСД является воспаление, локализующееся в островке Лангерганса, приводящее к деструкции р- клеток и дисфункции остальных клеточных типов. Это воспаление имеет аутоиммунный характер (аутоиммунный инсулит АИ) и вызывает гибель ₽- клеток, преимущественно путем апоптоза [50, 69].
Большую роль в изучении патогенеза АИ сыграли различные модели ИЗСД. Одной из наиболее распространенных моделей является линия мышей NOD (Non-Obese Diabetic mice — диабетические мыши без ожирения) [32]. У мышей этой линии спонтанно развивается аутоиммунный диабет, имеющий очень много сходных иммунологических черт с ИЗСД у человека [72]. К преимуществам исследований на линии NOD относятся возможность блокады цитокинов специфическими антисыворотками и изучение последующих изменений в развитии и течении заболевания [61]. Именно таким методом получены многие данные о роли отдельных цитокинов (ИЛ, фактора некроза опухолей — ФИО, интерферона-у — ИФ-у) в патогенезе АИ [20].
Другим широко используемым методом изучения АИ является аллотрансплантация островков Лангерганса между различными генетическими линиями, содержащими дефект того или иного гена (белков гистосовместимости — ГКГС, цитокинов и др.) с последующим изучением реакций отторжения [69]. Помимо перечисленных моделей, в исследованиях используются классические стрепто-зо- тоциновые и аллоксановые модели диабета, сходные с ИЗСД человека.
С помощью этих моделей в настоящее время показано, что при ИЗСД происходят изменения как в клеточном, так и в гуморальном звене иммунитета.
Основными типами антител, выявляемых при ИЗСД в крови пациентов, являются антитела к цитоплазматическим компонентам (3-клеток — ICA (например, к глутаминовой декарбоксилазе [78]). Эти антитела появляются задолго до клинических проявлений диабета и позволяют проводить его раннюю диагностику [2]. Хотя их роль в развитии сахарного диабета остается не до конца выясненной, в дальнейшем прогрессировании заболевания они, по всей видимости, нё играют решающей роли [16]. Об этом свидетельствует ряд данных.
- Не все обнаруживаемые антитела являются (3- цитотропными, часть из них действует на другие островковые клетки [33]. Это не позволяет объяснить избирательное прогрессирование деструкции Р-клеток при сохранении и даже пролиферации остальных клеточных типов.
- Число циркулирующих В-лимфоцитов, коммитированных к синтезу противоостровковых антител, у пациентов с ИЗСД очень мало [52].
- При развитии диабета частота выявления противоостровковых антител снижается от 80% (для недавно заболевших людей) до 50% и ниже (у лиц с длительным течением заболевания) [78].
Вместе с тем аутоантитела играют важную роль в возникновении осложнений сахарного диабета. Так, при автономной диабетической полинейропатии выявляются аутоантитела к компонентам нервных волокон, что, по-видимому, и является ее причиной [63]. Они также могут играть роль в нарушении функции р-клеток вследствие повреждения нервного аппарата самих островков. При этом снимается сенситизирующее действие ацетилхолина и других нейропептидов, высвобождающихся из окончаний БН, что приводит к нарушению синтеза и секреции инсулина [42].
Недостаточно изученным является тот факт, что при диабете увеличивается количество CD5+-B- лимфоцитов [52], на которые не действуют классические механизмы уничтожения аутореактивных клеток [9].
Инфильтрированные вследствие развития АИ островки Лангерганса содержат в порядке убывания их количества следующие типы иммунокомпетентных клеток: Т8-лимфоциты (цитотоксические Т-лимфоциты), резидентные островковые макрофаги, Т4-лимфоциты (хелперы типа 1) и Т4-2-лим- фоциты (хелперы типа 2) [32, 50]. Т4-1-лимфоциты отличаются от Т4-2-лимфоцитов способностью продуцировать ИФ-у, который стимулирует реак-
ции клеточного иммунитета и подавляет гуморальный иммунитет [9].
Т-лимфоциты играют важную роль в инициации и дальнейшем развитии аутоиммунного процесса, приводящего к уничтожению инсулинсин- тезирующих клеток островков [72]. При этом основная роль принадлежит Т8-лимфоцитам (цитотоксическим), в то время как Т4-лимфоциты (особенно типа 2) имеют второстепенное значение [32]. Цитотоксические реакции развиваются на фоне АИ и протекают при участии антигенпредставляю- щих клеток (АПК), функции которых при ИЗСД выполняют не только макрофаги [80], но и эндотелий сосудов [9], экзокринные клетки ацинусов [56] и Т4-лимфоциты [9]. Т-клетки играют большую роль в формировании диабета, что показали В. Boi- tard и соавт., которые с помощью тимэктомии и введения антител к CD4 защищали мышей линии NOD от развития диабета [16].
Начальное повреждение р-клеток прежде всего уменьшает количество транспортеров глюкозы GLUT-2 на их плазматической мембране [21]. Это снижает чувствительность р-клеток к глюкозе и приводит к уменьшению продукции инсулина еще до начала процесса деструкции [21]. Кроме того, высвобождающиеся при повреждении внутриклеточные ферменты и биологически активные вещества (продукты перекисного окисления липидов — ПОЛ), активируют резидентные макрофаги островков [11] и привлекают мононуклеары из кровотока [25]. При этом макрофаги, изначально предназначенные для очищающей функции [25], начи-. нают синтезировать ряд цитокинов, обусловливающих все последующее развитие АИ [11, 62]. Основными из этих цитокинов являются ИЛ-ip и ФНОа [65]. Помимо цитокинов, макрофаги начинают в больших количествах синтезировать НПУ [26], который, действуя аутокринно, усиливает продукцию ФНОа и ИЛ-1р [35], а также подавляет синтез и секрецию инсулина [49].
Важная роль ФНОа в индукции диабета подтверждается опытами с блокадой этого фактора антителами у мышей линии NOD, что защищает их от развития ИЗСД [20].ФНОа действует на афферентные волокна БН, опосредуя таким образом ряд центральных эффектов, выражающихся в изменении активности нейронов структур, имеющих отношение к регуляции потребления пищи и энергетического баланса [18]. Кроме того, ФНОа способен аутокринно влиять на макрофаги, потенцируя их активацию и усиливая синтез NO и ИЛ-1р [1 1].
ИЛ-ip уже непосредственно влияет на р-клетки, на которых экспрессирован первый тип его рецепторов [65]. Эффекты ИЛ-ip можно разделить на цитозольные (связаные с изменением активности ферментов цитозоля) и ядерные (связаные с изменением экспрессии генов). К цитозольным эффектам относятся активация синтеза простагландинов [43], усиление ПОЛ в митохондриях р-клеток [62]; подавление глюкозостимулированной секреции инсулина [24].
Нарушение секреции инсулина в ответ на гипергликемию, по всей видимости, является следствием ингибирования митохондриальных ферментов, участвующих в метаболизме глюкозы и образовании из нее стимуляторов секреции инсулина, таких как ацетил-КоА и интермедиаты цикла Кребса [24]. Однако этот эффект не является специфичным, так как он характерен и для других р- токсичных веществ (стрептозотоцин, активные кислородные радикалы — АКР) [25].
Ядерные эффекты ИЛ-ip опосредуются путем переноса фактора транскрипции NF-кВ из цитозоля в ядро. Этот фактор ответствен за реализацию большинства эффектов цитокинов, связанных с изменением активности генов [9, 43]. Его действие можно описать следующим образом.
- ИЛ-ip стимулирует экспрессию индуцируемой формы фермента синтазы NO [11], синтезирующей NO, который совместно с NO, продуцируемым макрофагами, подавляет секрецию инсулина [43], расширяет капилляры и вызывает активацию ПОЛ [48]. Однако в отсутствие ИФ-у синтез NO еще недостаточно велик для оказания выраженного действия [69].
- ИЛ-1р вызывает усиление синтеза белка Fas [61, 69]. Этот белок относится к суперсемейству рецепторов ФИО и способен при действии особого лиганда (FasL) запускать цепь внутриклеточных реакций, приводящих к апоптозу. Поскольку р- клетки в норме экспрессируют FasL [45], то одного ИЛ-ip достаточно для активации апоптоза даже в отсутствие действия остальных факторов [65].
- ИЛ-1р индуцирует начало синтеза рецепторов к ФНОа типа 1 (ФНО1Р) на р-клетках, что делает их чувствительными к действию цитокина ФНОа [9].
Перечисленные влияния ИЛ-ip на р-клетки потенцируются в условиях гипергликемии [25, 69].
Помимо непосредственного действия на р-клетки, ИЛ-ip вызывает также трансформацию клеток эндотелия сосудов. При этом они начинают секретировать простагландины и тромбоксаны [43]. На поверхности эндотелиальных клеток увеличивается количество белков адгезии — селектинов [9]. Все это в сочетании с увеличивающейся перфузией (под действием простагландинов и NO) приводит к привлечению лимфоцитов в ткань островка и возникновению инфильтрации, которая играет большую роль в развитии ИЗСД. так как подавление хемотаксиса лимфоцитов с помощью цитохалазина предотвращает развитие заболевания у мышей линии NOD [16].
Т4-1 -лимфоциты [9] и в меньшей степени макрофаги [1], привлеченные в островки, начинают активно синтезировать ИФ-у, который определяет дальнейший характер развивающихся аутоиммунных реакций в островках. Его эффекты заключаются в следующем.
- ИФ-у активирует АПК за счет усиления синтеза ими белков гистосовместимости II класса (ГКГС-П) [56, 80], которые участвуют в презентации антигена. При этом, помимо таких классических АПК. как макрофаги [80], их функцию начинают выполнять эндотелиальные клетки [9] и клетки панкреатических ацинусов [56]. Эффект ИФ-у потенцируется ФНОа, который синтезируется макрофагами [32].
- ИФ-у подавляет функцию Т4-2 лимфоцитов, снижая тем самым выработку цитокинов, ответственных за активацию В-лимфоцитов [9]. При этом
баланс реакций клеточного/гуморального иммунитета определяет также и ИЛ-2, синтезируемый Т4- 1-лимфоцитами и приводящий к подавлению функции Т4-2-лимфоцитов.
- ИФ-у является важным медиатором деструкции р-клеток [62], поскольку подавление его синтеза защищает мышей линии NOD от развития АИ [61]. Его влияние на р-клетки большей частью опосредуется продлением времени жизни многих мРНК, экспрессия которых активируется ИЛ-ip [69], усилением экспрессии Fas при совместном действии с ИЛ-1р [62, 69] и индукцией синтеза NO в р-клетках [61], который подавляет синтез инсулина и активирует ПОЛ [48, 62].
В результате значительной деструкции р-клеток под действием перечисленных цитокинов снижается внутриостровковая продукция инсулина и ГАМК, что, согласно рассмотренному ранее положению о функциональных синцитиях островка, растормаживает а-клетки и усиливает продукцию глюкагона [41]. Это сочетается с нарушением иннервации островка в результате диабетической полинейропатии [42], приводящей к снижению тонического влияния БН на синтез и секрецию инсулина р-клетками, что замыкает порочный круг [6].
Количество р-клеток в островках при диабете зависит от баланса их новообразования и гибели [13]. На начальных стадиях заболевания гибель р- клеток сочетается с активацией их пролиферации [68]. Кроме того, начинается процесс трансформации части 8-клеток в р-клетки, которые проходят через стадию совместного синтеза соматостатина и инсулина [28]. Это приводит к некоторой компенсации сахарного диабета, так как 30% р-клеток достаточно для полноценной секреции инсулина в ответ на введение глюкозы [68]. Однако при развитии деструктивного АИ выработка NO и ИФ-у подавляет пролиферацию р-клеток.
В условиях сформировавшегося ИЗСД основным источником новообразования р-клеток являются клетки панкреатических протоков и ацинусов, которые приобретают способность к синтезу инсулина [71] и участвуют в новообразовании островков [6]. Однако этот путь, по всей видимости, неэффективен, поскольку под действием цитокинов и иммунокомпетентных клеток наряду со снижением продукции инсулина количество р-клеток продолжает уменьшаться.
Суммируя приведенные выше сведения, можно выделить три основных пути разрушения р-клеток при сахарном диабете типа 1 (см. рисунок)
Путь первый — действие NO. Важной причиной деструкции р-клеток является возникновение внутриклеточных повреждений под действием NO [30, 48, 62], который продуцируется активированными макрофагами и самими р-клетками. NO при-
водит к генерированию клеткой АКР [48, 62], нарушающих целостность мембран, разобщающих окислительно-восстановительные процессы в митохондриях и вызывающих повреждения ДНК. При этом происходят изменения метаболизма глюкозы в митохондриях [24], что приводит к снижению глюкозостимулированной секреции инсулина [24]. Кроме того, NO активирует ряд ферментов, (например, поли-(АДФ-рибозо)-полимеразу, которые образуют множественные разрывы в ДНК.
Путь второй — Fas-зависимый. У пациентов с инсулитом по результатам биопсии выявлена экспрессия белка Fas на 97% р-клеток [50].Поскольку человеческие р-клетки экспрессируют FasL в норме [45], то индукция экспрессии Fas и рецепторов ФНО1Р на р-клетках под воздействием ИЛ-ip и ИФ-у составляет основной патогенетический механизм их деструкции [45, 69].Кроме того, FasL может поступать паракринно в виде растворимой формы FasL [9] и при непосредственном контакте с FasL-несущими лимфоцитами (Т4, Т8) [50, 69]. Помимо Fas, апоптоз подобным путем может запускаться при взаимодействии ФНОо с рецептором ФНО1РР (он же gp55) [73]. Это приводит к индукции специфических ферментов — каспаз, запускающих механизм апоптоза [73].
Путь третий — перфориновый. Цитотоксические лимфоциты при непосредственном контакте с Р-клетками способны встраивать в ее мембрану белок перфорин (гомолог белка С9 из системы комплемента), формирующий дефект плазмолеммы, через который поступают гранзимы — сериновые протеазы, вызывающие деградацию хроматина в ядре клетки [73] путем активации другой группы сериновых протеаз — каспаз. В деструкции р-клеток при сахарном диабете этот механизм играет наименьшую роль [50].
Все перечисленные пути способны в зависимости от концентрации повреждающих веществ приводить как к апоптозу, так и к некробиозу клеток [9]. Однако большое количество исследований сви- дельствует о том, что основным механизмом деструкции р-клеток является апоптоз [50, 69].
При аптоптозе происходит конденсация цитозоля, вызванная образованием множества межбелковых пептидных связей в результате деятельности специфических ферментов. Клетки уменьшаются в размере, возникают выпячивания цитоплазматической мембраны, которые в конечном итоге могут полностью отделяться от клетки, формируя небольшие апоптотические тельца [6]. Этот процесс не сопровождается выделением в окружающую среду каких-либо продуктов распада и протеолитических ферментов.
Некробиоз, напротив, сопровождается баллонной дистрофией р-клеток. При этом они увеличиваются в размерах и теряют практически все гранулы с инсулином [71].
В результате гибели большей части р-клеток островки уменьшаются в размере и в исходе АИ подвергаются либо фиброзу, либо кальцификации [71]. При этом периферически расположенные а- клетки значительно пролиферируют и проникают в центральные части островка, образуя тяжи между остатками р-клеток и фиброзной тканью.
Таким образом, в норме существует тонкий баланс между компонентами внутриостровковой иммунной системы (представленной резидентными макрофагами), локально продуцируемыми нейропептидами и классическими нейротрансмиттерами, высвобождающимися из нервных волокон, иннервирующих островки. При развитии сахарного диабета происходит нарушение этого баланса, выражающееся в начальной активации резидентных макрофагов с последующим запуском иммунных реакций. Цитокины, образующиеся в островках, в свою очередь, во-первых, приводят к нарушению эндокринных взаимодействий между островковыми клетками, во-вторых, извращают эффекты таких нейротрансмиттеров, как ацетилхолин. Все это создает единую систему нарушенных нейроимму- ноэндокринных взаимодействий, обусловливающую в конечном итоге деструкцию островков.
Суммируя сказанное, можно сделать заключение о том, что островок Лангерганса представляет собой один из примеров тесной взаимосвязи нервной, иммунной и эндокринной систем, что особенно ярко проявляется при патологии.
В настоящем обзоре представлены только основы современных взглядов на физиологию островков Лангерганса в норме и на мехнизмы деструкции р-клеток при сахарном диабете типа 1. Нами практически не рассматривалась роль структур ЦНС в патогенезе этого заболевания, что может являться предметом отдельной статьи.
Список литературы
1. Автандилов Г. Г., Трофимов В. С. // Труды ГИДУВ. — Л., 1971. -Т. 100. - С. 110-115.
2. Вартанян Н. Л., Соломина А. А., Зарубаев В. В. и др. // Пробл. эндокринол. — 2000. — Т. 46, № 3. — С. 3-7.
3. Колесник Ю. М., Абрамов А. В., Василенко Г. В. // Арх. пат.1992. - Т. 54. № 12. - С. 24-27.
4. Мельникова О. В. // Вести, пробл. биол. и мед. — 1999. — № 7. - С. 68-73.
5. Общая патология человека / Под ред. А. И. Струкова и др. — М., 1982. — Т. 1.
6. Севергина Э. С., Дюжева Т. Г., Разгулина Л. Е., Стахеев И. Б. Ц Арх. пат. - 1992. - Т. 52, № 12. - С. 18-23.
7. Федотов В. П., Садовникова Н. В. // Вести. АМН. — 1989.№ 5. - С. 27-34.
8. Ярилин А. А. Основы иммунологии. — М., 1999.
9. Ahren В., Havel Р. J. // Am. J. Physiol. — 1999. — Vol. 277.Р. R959-R966.
10. Allen R. Т., Cluck М. Ж, Agrawal D. // Cell. Mol. L. — 1998.Vol. 54, N«. - P. 427-445.
11. Babb E. L., Tarpley J.. Landt M., Easom R. A. // Biochem. J.
12. - Vol. 317, Pt 1. — P. 167-172.
13. Babb E. L., Tarpley J., Landt M., Easom R. A. // Biochem. J.1996. - Vol. 317. - P. 167-172.
14. Bernard C., Berthault M. F., Saulnier C., Ktorza A. // FASEB J. - 1999. - Vol. 13. - P. 101195-101205.
15. Berthoud H. R., Fox E. A., Powley T. L. // Am. J. Phvsiol. — 1990. - Vol. 258. - P. 2R160-2R168.
16. Bluthe R. M., Michaud B., Kelley K. W., Dantzer R. // Neu¬roreport. — 1996. — Vol. 7, N 9. — P. 1485-1988.
17. Boitard В. C., Yasunami R.. Dardenne M., Bach J. F. // J. Exp. Med. - 1989. - Vol. 169. - P. 1669-1680.
18. Brelje T. C., Parsons J. A.. Sorenson R. L. // Diabetes. — 1994.Vol. 43, N 2. - P. 263-273.
19. Bret-Dibat J. L.. Creminon C., Couraud J. Y. et al. // Brain Res. Bull. - 1997. - Vol. 42. - P. 443-449.
20. Bretherton-Watt D., Ghatei M. A., Legon S. et al. // J. Mol. Endocrinol. — 1991. — Vol. 6. — P. 13-17.
21. Brown G. R., Silva M. D., Thompson P. A., Beutler B. // Dia- betoiogia. - 1998. - Vol. 41. - P. 1502-1510.
22. Chen L., Alam Т„ Johnson J. Н. et al. // Biochemistry. — 1990. - Vol. 87. - P. 4088-4092.
23. Cooper G. J., Day A. J., Willis A. C. et al. // Biochim. Bio- phys. Acta. — 1989. — Vol. 1014. — P. 3247-3258.
24. Eckert B., Schwaninger M.. Knepel IK. // Endocrinology. —1996— Vol. 137, N 1. - P. 225-233.
25. Eizirik D. L., Sandler S., Hallberg A. et al. // Endocrinology.1989. - Vol. 125. - P. 752-759.
26. Eizirik D. Lf, Sandler S., Korsgren O. et al. // Acta Endocrinol.1989. - Vol. 121. - P. 849-856.
27. Elitsur Y., Luk G. D., Colberg M. // Neuropeptides. — 1994. — Vol. 26. - P. 286-295.
28. Fehmann H. C., Bode H. P., Ebert T. et al. // Horm. Metab. Res. - 1997. - Vol. 29. - P. 11572-11576.
29. Fernandes A.. King L. C., Guz Y. et al. // Endocrinology. —1997- Vol. 138. - P. 1750-1762.
30. Furuzawa Y, Ohmori Y, Watanabe T. // J. Vet. Med. Sci. — 1996. - Vol. 58. - P. 7641-7646.
31. Gale E. A. // Horm. Res. — 1996. — Vol. 45. — Suppl. 1. — P. 39-43.
32. Gardemann A., Jungermann K., Grosse К et al. // Exp. Clin. Endocrinol. Diabet. — 1995. — Vol. 103. — Suppl. 2. — P. 107-111.
33. Green E. A., Flavell R. A. // Immunol. Rev. — 1999. — Vol. 169. - P. 11-22.
34. Hallberg A., Juhlin C., Berne C. et al. // J. Intern. Med. —1995- Vol. 238, N 3. - P. 207-213.
35. Hansson H.-A., Edwall D., Lowenadler B. et al. // Cell Tissue Res. - 1989. - Vol. 255. - P. 467-474.
36. Hernanz A., Tato E., De la Fuente M. et al. // J. Neuroimmu- nol. - 1996. - Vol. 71. - P. 25-30.
37. Hill D. J., Petrik J., Arany E. // Diabetes Care. — 1998. — Vol. 21. - Suppl. 2. - P. B60-B69.
38. /ton N.. Okamoto H. // Nature. - 1980. - Vol. 283. - P. 100—102.
39. Janson J., Soeller W. C, Roche P. C. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1996. - Vol. 93, N 9. - P. 147283-147288.
40. Kawai M., Kishi K. // J. Reprod. Fertil. - 1997. - Vol. 109.P. 145-152.
41. Kennedy E., Rizzuto R., Theler J.-M. et al. // J. Clin. Invest. —1996- Vol. 98. - P. 2524-2538.
42. Koeslag J. H., Saunders P. T., Wessels J. A. // J. Endocrinol.1997. - Vol. 154. - P. 187-192.
43. Kohert К D., Axcrona M., Hehmke B. et al. // Regulat. Pep¬tides. - 1999. - Vol. 82. - P. 71-79.
44. Kwon G., Corbett J. A., Hauser S. et al. // Diabetes. — 1998. — Vol. 47, N 4. — P. 583-591.
45. Liu H. P., Leong S. K. Tay S. S. // J. Hirnforsch. — 1994. — Vol. 35. - P. 4501-4510.
46. Loweth A. C., Williams G. T., James R. F. L. et al. // Diabetes.1998. - Vol. 47, N 5. - P. 727-732.
47. McCarty M. F. // Med. Hypothes. — 1996. — Vol. 46, N 2. — P. 277-280.
48. McDonald J. K, Greiner F, Wood J. G., Hoe B. D. // Cell Tis¬sue Res. - 1987. - Vol. 249. - P. 12.
49. Mohan I. K, Das U. // Free Rad. Biol. — 1998. — Vol. 25, N 7. - P. 757-765.
50. Morgan D. G., Kulkarni R. H., Hurley J. D. et al. // Diabetolo- gia. - 1998. - Vol. 41. - P. 1482-1491.
51. Moriwaki M., /ton N., Miyagawa J. et al. // Diabetologia. —1999- Vol. 42, N 11. - P. 1332-1340.
52. Mulder H., Myrsn-Axcrona U., Gebre-Medhin S. et al. // Mi- crosc. Res. Tech. - 1998. - Vol. 43. - P. 4313-4321.
53. Munoz A., Gallart T., Usac E. F. et al. // Diabetologia. —1995- Vol. 38, N 1. - P. 62-72.
54. Myrsen U., Ahren B., Sandier F. // Regulat. Peptides. — 1995.Vol. 60. - P. 119-131.
55. Nielsen J. H., Svensson C, Galsgaard E. D. et al. // J. Mol. Med. - 1999. - Vol. 77, N 1. - P. 162-166.
56. Orel R. H. Ц Metabolism. - 1976. - Vol. 25. - Suppl. - P 1303-1313.
57. Pavlovic D., Vandewinkel M., Vanderauwera B. et al. // J. Clin. Endocrinol. - 1997. - Vol. 82, N 7. - P. 2329-2336.
58. Persson-Sjogren S., Forsgren S., Rooth P., Taljedal I. B. // Cell Tissue Res. - 1996. - Vol. 284. - P. 3391-3400.
59. Persson-Sjouml S., Forsgren S., Tauml l.-B. // Peptides. —1998- Vol. 19. - P. 1233-1240.
60. Phillippe J., Missotten M. // Endocrinology. — 1990. — Vol. 127. - P. 1640-1645.
61. Portis A. J., Rajotte R. V., Krukoff T. L. Ц Cell Transplant. —1994_ Vol. 3. - P. 163-170.
62. Rabinovitch A., Suarezpinzon W. L., Sorensen O. et al. // J. Immunol. - 1995. - Vol. 154, N 9. - P. 4874-4882.
63. Rabinovitch A. // Diabet. Metab. — 1998. — Vol. 14, N 2. — P. 129-151.
64. Rabinowe S. L., Brown F. M., Watts M., Smith A. M. // Diabe¬tes Care. - 1990. - Vol. 13. - P. 1084-1088.
65. Rasmussen H., Zawalich К. C., Ganesan S. et al. // Diabetes Care. - 1990. - Vol. 13. - P. 655-666.
66. Reimers J. I. // Dan. Med. Bull. - 1998. - Vol. 45. - P. 2157-2180.
67. Schmitz O., Nyholm B., Juhl С. B. et al. // J. Endocrinol. In¬vest. - 1999. - Vol. 22, N 5. - Suppl. 33-36.
68. Sjoholm A. // Diabetes. — 1996. — Vol. 45, N 8. — P. 1057— 1062.
69. Sreenan S., Pick A. J., Levisetti M. et al. // Diabetes. — 1999.Vol. 48. - P. 5989-5996.
70. Suarez-Pinzon W., Sorensen O., Bleackley R. C. et al. // Dia¬betes. - 1999. - Vol. 48, N 1. - P. 21-28.
71. Tahmasebi M., Puddefoot J. R., Inwang E. R., Vinson G. P. // J. Endocrinol. - 1999. - Vol. 161. - P. 2317-2322.
72. Taniyama H., Hirayama K., Kagawa Y. et al. // J. Vet. Med. Sci. - 1999. - Vol. 61. - P. 7803-7810.
73. Toyoda H., Formby B. // Bioessays. — 1998. — Vol. 20, N 9.P. 750-757.
74. Trapani J. A., Jans P., Smyth M. J. et al. // Cell. Deat. D. —1998- Vol. 5, N 6. - P. 488-496.
75. Uchida T., Endo T. // Cell Tissue Res. — 1989. — Vol. 255. — P. 379-384.
76. Wang J., Chakravarthy B. R., Morley P. et al. // Cell Signal. —1996- Vol. 8, N 4. - P. 305-311.
77. Winkler H., Fisher-Colbrie R. Ц Neuroscience. — 1992. — Vol. 49. - P. 497—500.
78. Xu G. G., Gao Z. Y., Borge P. D., Wolf B. A. // J. Biol. Chem.1999. - Vol. 274. — P. 2518067-2518074.
79. Yano M., Moriuchi R., Kawasaki E. et al. // J. Autoimmun. —2005- Vol. 8, N 1. - P. 83-96.
80. Zawalich W. S., Zawalich К. C, Rasmussen H. // Endocrinolo¬gy. - 1989. - Vol. 125. — P. 2400-2406.
81. Zhu J., Mix E., Olsson T., Link H. // Immunoph. Im. — 1995.Vol. 17, N 1. - P. 109-136.
Об авторах
Ю. М. КолесникЗапорожский государственный медицинский университет
Россия
М. А. Орловский
Запорожский государственный медицинский университет
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Колесник Ю.М., Орловский М.А. Панкреатические островки: некоторые аспекты морфологии, физиологии и процессов деструкции при сахарном диабете I типа. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):3-10. https://doi.org/10.14341/probl11386
For citation:
Kolesnik Yu.M., Orlovskii M.A. Pancreatic islets: some aspects of the morphology, physiology and destruction processes in diabetes mellitus type. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):3-10. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11386

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).