Preview

Проблемы Эндокринологии

Расширенный поиск

Участие ганглиозидов в связывании тироксина плазматическими мембранами

https://doi.org/10.14341/probl11370

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Помимо внутриклеточных рецепторов тиреоидных гормонов, на плазматических мембранах (ПМ) некоторых клеток были обнаружены специфические сайты связывания Т3 и Т4 и установлена взаимосвязь между мембранным приемом и липидным составом мембран. Изучены параметры связывания 125I-T4 с высокоочищенными плазматическими мембранами клеток печени и головного мозга крыс. Было обнаружено, что клеточные мембраны печени и головного мозга содержат по два сайта связывания гормонов, причем один из этих участков характеризуется высоким сродством и низкой связывающей способностью, а другой – низким сродством и более высокой способностью связывания. Установлено, что константа ассоциации высокоаффинного участка мембран гепатоцитов выше, чем у мембран клеток головного мозга. Мембранные рецепторы Т4 могут быть значимыми в процессе “распознавания" клетки гормоном. Эксперименты in vivo и in vitro с 125I-Т4 и 14С-меченого тироксина во фракции ганглиозида показали заметное связывание гормона с фракцией Gm3, что, очевидно, указывает на участие этого ганглиозида во взаимодействии Т4 с мембранным рецептором. Возможно, что ганглиозиды, расположенные на мембранной поверхности, являются компонентами рецепторов или функционируют как рецепторы.

Для цитирования:


Саатов Т.С., Гулямова Ф.Я., Усманова Г.У. Участие ганглиозидов в связывании тироксина плазматическими мембранами. Проблемы Эндокринологии. 1995;41(2):28-30. https://doi.org/10.14341/probl11370

For citation:


Saatov T.S., Gulyamova F.Ya., Usmanova G.U. Contribution of gangliosides to thyroxin binding with plasma membranes. Problems of Endocrinology. 1995;41(2):28-30. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11370

Необходимым условием реализации эффекта гормона является наличие рецептора в реагирующих клетках. Известно, что рецепторы гормонов щитовидной железы локализованы преимущественно внутриклеточно - в ядерном хроматине, митохондриях, цитозоле [1]. Однако тиреоидные гормоны - тироксин (Т4) и трийодтиронин (Т3), представляющие собой гидрофобные соединения, обладающие высокой мембранотропностью и способны оказывать значительное влияние на функцию мембран клеток. К настоящему времени обнаружены специфические участки связывания для Т4 и Т3 на плазматических мембранах ПМ некоторых видов клеток. Показана зависимость гормонального связывания от состава фосфолипидов и жирных кислот ПМ [5, 7].

Ключевым моментом в эффекте тиреоидных гормонов на уровне мембран, безусловно, является модификация, которой подвергаются мембранные липиды. Преимущественная локализация ганглиозидов на наружной поверхности ПМ, а также такие уникальные свойства их молекул, как большое структурное разнообразие углеводных цепей, предполагают, как нам кажется, их участие в связывании тиреоидных гормонов ПМ. Кроме того, было показано, что Т4 необходим для нормального метаболизма моносиалоганглиозидов при созревании клеток [10].

Материалы и методы

В экспериментах использовали половозрелых крыс-самлов линии Вистар массой тела 150-250 г.

Выделение высокоочищенных препаратов ПМ печени и мозга крыс проводили модифицированными нами методами

В.   Л. Воейкова [2] и К. Krislrnan и Р. Bakiram [9]] Чистоту препаратов мембран определяли по увеличению активности маркерных ферментов Nn+, К+-АТФазы, Mg2+-AT®n3bi, 5'- нуклеотидазы и аденилатциклазы в сравнении с гомогенатом. Подробное описание метода выделения очищенных ПМ из тканей печени и мозга и результаты определения чистоты полученных препаратов представлены в статье Я. X. Туракулова и соавт. [5].

Анализ связывания меченого гормона с препаратами мембран проводили по методу J. Ghnrbi-Chini и I. Torresrni [7]. Константы ассоциации (Ка) и максимальную связывающую емкость (MCE) рецепторов рассчитывали по кривой Скет- чарда [5].

Изучение связывания Т4 с различными фракциями ганглиозидов. в опытах in vitro проводили путем инкубации фракций, выделенных тоиквслоKнвK хроматографией (ТСХ), в среде, содержащей 10 мкл |4С-Т4 (0,0001 мкКи), в течение 1 ч. ' после чего их отделяли от несвязавшегося гормона. Ган-ч г.чиозиды. связанные с меткой, использовали для подсчета радиоактивности. В опытах in vivo крысам вводили иС-Т4 из расчета 0,05 мкКи на 100 г массы тела, животных забивали через 4 ч.

Ганглиозиды из тканей экстрагировали по методу P. Folcli и соавт. [6] с собственными модификациями. Очистку выделенных ганглиозидов производили хроматографией на сефадексе G-25 и на ДЭАЭ-целлюлозе, затем подвергали диализу и лиофилизировали. О количестве выделенных ганглиозидов судили по содержанию в них сиаловой кислоты, которое определяли перKвдат-резврцuuовым методом. Разделение гаи- гливзидов на фракции осуществляли методом ТСХ по Э. В. Дятловицкой [3|. Идентификацию выделенных фракций ганглиозидов проводили сравнением значений их Rf с этим' показателем фракций ганглиозидов мозга быка (“Serva”. Германия), а также коммерческих фракций ганглиозидов (“Sigma”. США).

Все полученные результаты обрабатывали, используя критерий Стьюдента.

Результаты и их обсуждение

Связывание меченого Т4 высокоочищенными препаратами ПМ клеток печени и мозга крыс было насыщаемым и специфическим [5]. Анализ в координатах Скетчарда (рис. 1) выявил по 2 сайта связывания гормона в мембранах как печени, так и мозга крыс. Первый центр связывания имел высокое сродство к Т4 и низкую емкость, а второй - низкую аффинность и более высокую емкость. Показано, что Ка высвкоаффинивго сайта в мембранах печени выше, чем в мембранах мозга (соответственно 1,8 ± 0,03 и 1,3 ± 0,02). Полученные данные коррелируют с параметрами связывания Т3 ядерными сайтами клеток анало-

ными ПМ печени (а) и мозга (б) крыс, инкубированными в стандартных условиях с меченым Т4 и возрастающими концентрациями стабильного Т4.

К, (сплошная линия) — Кл высокваффииивго сайта; К2 (пунктирная линия) - Кд иизооаффuиивгв сайта; МСЕ] и МСЕ2 - максимальная связывающая емкость соответствующих сайтов; а: К! = 1,8 ± 0,03*Ю9 М"1, МСЕ1 = 5.0 ± 0,7 пмоль на 1 мг белка. К2 = 0,12 ± 0 01 хЩ М”. МСЕ2 = 38.6 ± 7.3 пмоль на 1 мг белка: п: К., - 1,3 ± 0,02хщ9 м-1, МСЕ, = 2.5 ± 0.7 пмоль на 1 мг белка, К2 = 0,2 ± 0.02хЦ)9 М 1, МСЕ2 = 28,0 ± 8.1 пмоль на 1 мг белка.

По оси ординат — отношение связанного 1251 = Т4 с ПМ к свободному: по оси абсцисс - концентрация Т4 (в пг на 100 мкг белка ПМ).

гичных тканей. По-видимому, мембранное связывание обеспечивает транспорт, накопление и обмен тиреоидных гормонов.

Мембранные рецепторы Т4 могут также иметь важное значение в процессе узнавания клетки гормоном. В этом плане представляло интерес изучение связывания меченого гормона с ганглиозидами ПМ.

Полученные данные, представленные в виде диаграмм на рис. 2, указывают на тканеспеци- фичность в поглощении меченого гормона. Так, ганглиозиды мембран печени связывали метку активнее, чем ганглиозиды мембран мозга крыс, за исключением дисиалоганглиозидов GDln и GD3. Следует отметить, что во всех экспериментах наблюдалось максимальное связывание гормона с ганглиозидом GM3, причем оно было наиболее значительным в опытах с ПМ печени. По- видимому, это различие связано с более высоким процентным содержанием фракции GMa в мембранах печени.

С целью уточнения полученных результатов были проведены эксперименты по изучению включения ИС-Т4 во фракции ганглиозидов in vivo (рис. 3).

Наибольшее включение метки для печени наблюдалось во фракциях GDla, GMI, GM3. При исследовании связывания гормона с ганглиозидами мембран печени показано, что общее включение метки приблизительно на порядок выше по сравнению со связыванием в мембранах мозга. Распределение же меченого гормона по фракциям ганглиозидов также показало максимальное связывание 14С-Т4 с ганглиозидом GM3. Включение метки во фракции моносиалоганглиозидов, а также во фракцию GDla в клетках печени аналогично результатам опытов in vitro значительно превышало ее включение в ганглиозиды мембран мозга.

При сравнении полученных в опытах in vivo и in vitro данных с количественным определением состава ганглиозидов печени и мозга крыс (см. таблицу) отмечается определенная корреляция между содержанием ганглиозида и связыванием им меченого гормона.

Однако, что касается ганглиозида GM3, процентное содержание которого относительно невелико, а связывающая способность значительно превышает таковую для других фракций, то, видимо, он играет немаловажную роль в мембранной рецепции Т4.

Возможная роль ганглиозида GM3 заключается либо в связывании Т4 с последующей передачей гормона на рецептор, либо в том, что он, связываясь с Т4, конформационно преобразует фос- фогликолипидное микроокружение рецептора, приводящее к его активации. Не исключено, что этот ганглиозид является составляющей частью рецепторного комплекса, как в случае тиреотропного гормона [4].

  1. S. Hakomori [8] показал, что ганглиозиды, внедряясь церамидным остатком в белки, могут регулировать их рецепторную функцию. При этом углеводные цепочки молекул ганглиозида, как антенны, направлены к поверхности клеточной мембраны и, по-видимому, первыми вза-

GT Gjje 5Д1и GM, gA2 СДЭ GM2 gM3

Рис. 2. Включение меченого Т4 во фракции ганглиозидов НМ печени (заштрихованные столбики) и мозга (светлые столбики) in vitro.

„ - >2SI=T4.      14C=T4.

Рис. 3. Связывание 14C=T4 отдельными фракциями ганглиозидов ПМ печени (светлые столбики) и мозга (заштрихованные столбики) in vivo.

имодействуют с лигандом. Таким образом, можно с определенной долей вероятности предположить, что ганглиозид GM3, расположенный на поверхности ПМ вблизи рецепторного белка или, возможно, будучи связанным с ним, образует “ловушку” для Т4 и обеспечивает взаимодействие гормона с мембранным рецептором.

В ы в о д ы

  1. Выявлены два сайта связывания Т4 очищенными ПМ печени и мозга крыс, причем Ка высо-

Содержание индивидуальных ганглиозидов в печени и мозге крыс (в мкг сиаловых кислот на I г нативной ткани; п = 8)

Фракция ганглиозидов |

Печень

Мозг

Gq

Следы

375.2 ± 29,5

GT1

50,5 ± 6,1

355,6 ± 25.6

GDtb

14,2 ± 1,3

156,8 ± 11.4

GDla

71.7 + 6,2

823.2 ± 67,7

GD2

-

163,4 ± 15,4

GD3

-

114,8 ± 12,1

GM1

93.4 ± 9.3

229,b ± 20.3

GM2

67,6 ± 6,5

249.2 ± 19,4

GM3

202.3 ± 21,2

341,6 ± 24,2

коаффинного сайта в мембранах печени была несколько выше.

Аналнзсвясывания мсченс^т^о Т4 синдивидв- альными ганглиозидами ПМ печени и мозга крыс показал максимальное связывание гормона с ганглиозидом GM3 в опытах iv vivo и in vitro

OSZAR »

Список литературы

1. Верещагина Т. В., Трапкова А. А. // Успехи соврем, биол. — 1984. — Т. 97, выл. 3. — С. ИИ7—И57.

2. Воейков В. Л. // Биоорган, химия. — 1976. — Т. 2. — С.1672—1679.

3. Препаративная биохимия липидов / Бергельсон Л. Д.. Дятловицкая Э. В., Молотковский Ю. Г. и др. — М.. 1981.

4. Проказова Н. В. // Успехи биол. химии. — 1982. — Т. 23. — С. И0—60.

5. Туракулов Я. X, Сайтов Т. С., Гулямова Ф. Я. и др. // Биохимия. — 1991. — Т. 56. — С. 839—8И5.

6. Folch Р. J., Lees М., Sloane—Stanley С. Н. // J. biol. Chem. — 1957. — Vol. 226. — P. И97—509. '

7. Gharbi—Chlli J, Torresani I. // Biochem. biophys. Res. Commun. — 1979. — Vol. 88. — P. 170—177.

8. Hakomori S.I. // Aim. Rev. Biochem. — 1981. — Vol. 50. — P. 733—76И.

9. Krishnan K. S., Balaram P. // Exp. Cell Res. — 1976. — Vol. 101. — P. 299.

10. Noguchi T, Tetsuro S. // J. Neurochem. — 1986. — Vol. И7. — P. 1785—1792.


Об авторах

Т. С. Саатов

Институт биохимии Республики Узбекистан


Узбекистан


Ф. Я. Гулямова

Институт биохимии Республики Узбекистан


Узбекистан


Г. У. Усманова

Институт биохимии Республики Узбекистан


Узбекистан


Рецензия

Для цитирования:


Саатов Т.С., Гулямова Ф.Я., Усманова Г.У. Участие ганглиозидов в связывании тироксина плазматическими мембранами. Проблемы Эндокринологии. 1995;41(2):28-30. https://doi.org/10.14341/probl11370

For citation:


Saatov T.S., Gulyamova F.Ya., Usmanova G.U. Contribution of gangliosides to thyroxin binding with plasma membranes. Problems of Endocrinology. 1995;41(2):28-30. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11370

Просмотров: 490


ISSN 0375-9660 (Print)
ISSN 2308-1430 (Online)
OSZAR »